It is the cache of ${baseHref}. It is a snapshot of the page. The current page could have changed in the meantime.
Tip: To quickly find your search term on this page, press Ctrl+F or ⌘-F (Mac) and use the find bar.

Revista Ceres - Reaction of soybean cultivars to the sudden death syndrome pathogens Fusarium tucumaniae and F. brasiliense

SciELO - Scientific Electronic Library Online

 
vol.60 issue2Natural regeneration of cerrado under plantation of Eucalyptus camaldulensis Dehn. in the north of Minas Gerais, BrazilEfficiency of different molecules on the reduction of sheath blight symptoms in rice and on Rhizoctonia solani growth in vitro author indexsubject indexarticles search
Home Pagealphabetic serial listing  

Services on Demand

Article

Indicators

Related links

Share


Revista Ceres

Print version ISSN 0034-737X

Rev. Ceres vol.60 no.2 Viçosa Mar./Apr. 2013

http://dx.doi.org/10.1590/S0034-737X2013000200009 

FITOSSANIDADE

 

Caracterização de genótipos de soja na região dos Cerrados quanto à reação à podridão vermelha da raiz, causada pelos fungos Fusarium tucumaniae e Fusarium brasiliense

 

Reaction of soybean cultivars to the sudden death syndrome pathogens Fusarium tucumaniae and F. brasiliense

 

 

Austeclinio Lopes de Farias NetoI; Alexei de Campos DianeseII; Mateus Rollemberg SantinIII; Bárbara Cristina do CoutoIII

IEngenheiro-Agrônomo, Ph.D. Embrapa Agrossilvipastoril, Avenida das Jacarandás, 2639, Centro, 78550-003, Sinop, Mato Grosso, Brasil. austeclinio.farias@embrapa.br (autor para correspondência)
IIBiólogo, Doutor. Embrapa Cerrados, Rodovia BR 020, Km 18, 73310-970, Planaltina, Distrito Federal, Brasil. alexei.dianese@cpac.embrapa.br
IIIEngennheiro-Agrônomo. Embrapa Cerrados, Rodovia BR 020, Km 18, 73310-970, Planaltina, Distrito Federal, Brasil. mateusantin@gmail.com; barbaracristine.couto@wehrmann.com.br

 

 


RESUMO

A podridão vermelha da raiz de soja vem crescendo em importância, a cada ano, no Brasil, com aumento substancial de participação nas perdas de produtividade. Na região dos Cerrados, são escassos os dados de campo sobre a reação de cultivares à doença. Assim, este trabalho teve como objetivo a caracterização, em campo, de uma série de genótipos de soja, quanto à resistência à podridão vermelha da raiz, em solos naturalmente infestados. Foram testados 71 genótipos de soja, sendo 16 do ciclo de maturação precoce, 28 do ciclo de maturação médio e 27 do ciclo de maturação tardio, em quatro localidades, no entorno do Distrito Federal. O delineamento experimental foi o de blocos ao acaso, com quatro repetições. A caracterização foi realizada por meio dos níveis de incidência e severidade dos sintomas foliares. Genótipos com altos níveis de resistência à doença foram observados nos três grupos de maturação, em cultivares e linhagens em fase final de melhoramento.

Palavras-chave: resistência genética, Glycine max, morte súbita


ABSTRACT

Loss due to soybean sudden death syndrome (SDS) has increased considerably in Brazil in recent years. Field data on reaction of soybean genotypes to SDS infection in the Cerrados is almost nonexistent. Therefore, the objective of this work was to characterize the reaction of soybean genotypes, adapted to the Cerrados, to SDS infection on field trials in areas with natural inoculum. Seventy one soybean genotypes were used in the experiments, sixteen early season, twenty eight midseason and twenty seven late season genotypes, in field trials located in four different rural properties around Brazil's Federal District. The experimental design used was the randomized complete block, with four repetitions. The characterization was performed using the levels of disease incidence and severity of foliar symptoms Genotypes with good levels of disease resistance were observed in all three maturity groups, cultivars and lines in the final stages of development.

Key words: genetic resistance, Glycine max, root rot.


 

 

INTRODUÇÃO

Dentre as várias doenças fúngicas que afetam a cultura da soja [Glycine max (L.) Merr.], no Brasil, a podridão vermelha da raiz (PVR), cujos agentes etiológicos são os fungos Fusarium tucumaniae e F. brasiliense (Aoki et al., 2005; Oliveira, 2010), vem apresentando incrementos elevados de participação nas reduções de produtividade de grãos, encontrando-se disseminada em todas as regiões do país (Embrapa Soja, 2001; Embrapa Soja, 2006). Os patógenos são fungos de solo, que infectam as raízes das plantas hospedeiras. A doença causa redução significativa na nodulação e perda de massa radicular. Os sintomas na parte aérea incluem clorose internerval, necrose foliar e desfolha prematura (Hartman et al., 1997; Farias Neto et al., 2006). Os sintomas foliares desenvolvem-se, com alta taxa de progresso, geralmente durante o estádio reprodutivo da soja (Gibson et al., 1994).

Não existe controle químico adequado para a PVR, sendo que algumas práticas culturais têm sido capazes de reduzir seu impacto (Rupe & Hartman, 1999). Rupe et al. (1997) demonstraram que a rotação de soja com sorgo e trigo reduziu significativamente a população do patógeno. Solos bem drenados (Silva et al., 2002), juntamente com o uso de cultivares resistentes, têm sido as práticas agronômicas mais eficientes para reduzir o impacto dessa doença (Farias Neto et al., 2006; Embrapa Soja, 2002). No entanto, a resistência à doença é parcial, tendo em vista que mesmo os genótipos considerados resistentes apresentaram sintomas típicos da podridão vermelha da raiz (Yorinori, 2000; Silva et al., 2002; Gásperi et al., 2003).

Na região dos Cerrados, são escassos os dados de campo sobre a reação de cultivares de soja à PVR, de forma que a caracterização de genótipos quanto à resistência a esta doença é de fundamental importância para a região.

Este trabalho teve como objetivo a caracterização de genótipos de soja quanto à resistência à podridão vermelha da raiz, em áreas naturalmente infestadas com os fungos.

 

MATERIAL E MÉTODOS

Amostras de plantas com sintomas de PVR foram coletadas, nas áreas experimentais, e o isolamento do organismo foi efetuado a partir de fragmentos da raiz, desinfestados superficialmente em solução de hipoclorito de sódio (2,5 %). Os fragmentos desinfestados foram, então, transferidos para placas de Petri com meio de cultura (1 litro de BDA + 10 mg estreptomicilina). A seguir, as placas foram incubadas a 25ºC (fotoperíodo de 12 h) e avaliadas diariamente para que a presença de Fusarium spp. fosse detectada.

Após detectadas, as colônias de Fusarium spp. foram transferidas para placas de Petri, contendo o meio de cultura acima descrito, e incubadas a 25ºC (fotoperíodo de 12 h) por sete dias. As placas com os isolados do patógeno eram, então, armazenadas em uma câmara fria, a 10 ºC.

Amostras de cada isolado foram analisadas sobre uma lâmina, que recebeu uma gota de água destilada. Foram então medidos os esporos, conforme os critérios morfológicos descritos por Aoki et al. (2005). Foram feitas 50 medições de cada estrutura dos isolados.

Foram caracterizados 71 genótipos de soja, sendo 16 do ciclo de maturação precoce, 28 do ciclo de maturação médio e 27 do ciclo de maturação tardio. Os ensaios foram instalados, separadamente, por grupo de maturação. O delineamento experimental utilizado foi o de blocos ao acaso, com quatro repetições. Cada unidade experimental correspondeu a uma linha de cinco metros de comprimento, plantada com um único genótipo. O espaçamento entre as linhas foi de 50 cm e a população de plantas em torno de 300 mil/ ha, com as sementes sendo incorporadas ao solo na profundidade de 3 cm. O ensaio foi conduzido de 02/11/2008 a 07/11/2008, em quatro propriedades, no Estado de Goiás, Fazendas MR (MR) e Salto Verde (SV) em Luziânia, Pamplona (PA) em Cristalina e Três Pinheiros (TP), em Formosa, em áreas com histórico de ocorrência da podridão vermelha da raiz.

A incidência (DI) e a severidade (DS) da podridão vermelha da raiz foram avaliadas no estádio fenológico R6 (Ferh et al., 1971). A incidência (DI) foi avaliada, em cada parcela, como a percentagem de plantas em relação ao total com sintomas foliares típicos da doença. Já a severidade foliar (DS) foi avaliada, em cada parcela, utilizando-se a seguinte escala diagramática (Farias Neto et al., 2006):

1= 0 a 10% da área foliar com clorose ou de 1 a 5% da área foliar com necrose; 2 = 10 a 20% da área foliar com clorose ou de 6 a 10% da área foliar com necrose; 3 = 20 a 40% da área foliar com clorose ou de 10 a 20% da área foliar com necrose; 4 = 40 a 60% da área foliar com clorose ou de 20 a 40% da área foliar com necrose; 5 = > que 60% da área foliar com clorose ou > 40% da área foliar com necrose; 6 = até 33% de desfolha; 7 = de 34 a 66% de desfolha; 8 = > que 66% de desfolha e 9 = morte prematura da planta.

Um índice da doença (ID) foi calculado, usando-se a fórmula [(DI) x (DS)]/9 (Farias Neto et al., 2006).

Os dados obtidos foram submetidos à análise de normalidade dos erros, pelo teste de Shapiro-Wilk; à análise de variância por grupo de maturação e por local, e à análise conjunta por grupo de maturação, utilizando-se o programa SAS (SAS Institute, 2000). Considerando-se os resultados das análises de variância conjunta, as médias dos genótipos por grupo de maturação e por local, significativas no teste F, foram agrupadas por Scott-Knott. Para isto, foi utilizado o aplicativo computacional Genes (Cruz, 2008).

 

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Foram observados, nos quatro locais de teste, sintomas típicos da PVR nas raízes e nas folhas das plantas. Isolados retirados de raízes infectadas foram identificados em laboratório, seguindo-se os critérios morfológicos descritos por Aoki et al. (2005), como sendo F. brasiliense e F. tucumaniae. Nas duas propriedades em Luziânia, MR e SV, foram identificados isolados apenas de F. tucumaniae; já na propriedade TP, em Formosa, somente isolados de F. brasiliense e, em Cristalina, na propriedade PA, ocorreram as duas espécies (F. tucumaiae e F. brasiliense). As médias de incidência e de severidade dos sintomas da doença foram altas nos locais MR, SV e PA e baixas em TP, e não foram observados sintomas da doença nos ensaios de genótipos de ciclo precoce e médio, no local TP. Nos locais MR, SV e PA, foi possível avaliar inclusive os genótipos precoces, que normalmente escapam à doença, em função do ciclo (Rupe et al., 1995). Os sintomas nas folhas tiveram início, de uma forma geral, no estágio R4/R5. Foi observada variabilidade genética para reação à doença em todos os ensaios.

Segundo o teste de Shapiro-Wilk, os erros estavam normalmente distribuídos. As análises conjuntas realizadas nos três grupos de maturação, precoce (Tabela 1), médio (Tabela 2) e tardio (Tabela 3), mostraram efeitos significativos a 1% de probabilidade para as fontes de variação "locais", "cultivares" e "locais*cultivares". Por causa da presença de efeitos significativos da interação "locais*cultivares", os genótipos de cada grupo de maturação foram avaliados por local. A presença de interação genótipo*ambiente é comum em ensaios de reação de genótipos à PVR, tendo em vista o controle quantitativo do caráter, com grande influência do ambiente (Igbal et al., 2001; Nijti et al., 2001).

 

 

 

 

 

 

As médias do índice da doença dos ensaios precoces, conduzidos nas fazendas MR, SV e PA, foram de 4,90, 8,12 e 5,35, respectivamente (Tabela 4), perfazendo média de 6,13. Nesses ensaios não foi observada diferença significativa entre os genótipos, para reação a PVR no local PA, enquanto, nos locais MR e SV foram observados dois e quatro grupamentos significativamente diferentes, respectivamente. Muitos genótipos apresentaram, nesses ensaios, bons níveis de resistência aos patógenos, com destaque para os cultivares BRSMG 751, BRS Raíssa, BRSMG 750S e BRSGO 7560.

 

 

Para os ensaios de ciclo de maturação médio, foram observadas médias de ID de 11,18, 14,60, 11,60 e 2,30, nas fazendas MR, SV, PA e TP, respectivamente (Tabela 5). A média geral dos ensaios foi de 10,08. Assim como no ensaio de ciclo precoce, não foram observados sintomas foliares de PVR, na Fazenda TP, no ensaio de ciclo médio. Altos níveis de resistência foliar a PVR foram observados em vários cultivares, com destaque para BRS Milena, BRSMG-810C, BRSMG-850GRR e BRS Valiosa. Esses cultivares apresentam-se como ótimas opções de cultivo para áreas infestadas pelo fungo causador da PVR.

Os ensaios de ciclo tardio apresentaram os maiores valores entre todos os ensaios (Tabela 6), atingindo uma média geral de 14,57. Os maiores índices observados nos ensaios de ciclo tardio em relação aos de ciclo médio, e mas (Rupe et al., 1999). O efeito da doença na produtividestes em relação aos de ciclo precoce, podem ser explica-dade depende fundamentalmente do estádio fenológico dos pela maior exposição dos genótipos de soja de ciclo da planta, da extensão dos sintomas radiculares e dos tardio ao patógeno (Westphal et al., 2008). Quando são sintomas foliares e do progresso da doença a partir destestados em casa de vegetação, as médias de forma geral ses sintomas. Farias Neto et al. (2006), trabalhando com são similares para genótipos de diferentes ciclos de parcelas inoculadas e não inoculadas com Fusarium spp., maturação (Farias Neto et al., 2008). Entretanto, os testes observaram reduções em produtividade de grãos de até de campo, especialmente em fases finais de programas de 27%, em cultivares susceptíveis, que apresentaram sevemelhoramento, refletem mais a realidade do que os testes ros sintomas foliares, correspondendo a cerca de 30% de realizados em casa de vegetação (Farias Neto et al., 2008). desfolha no estádio R6. Dessa forma, Farias Neto et al. Os cultivares BRS Tuiuiú e P98R91 apresentaram os maio-(2006) observaram que, para cada unidade de índice de res índices, respectivamente. Os sintomas foliares menos PVR, ocorreu, em média, 1% de queda em produtividade severos foram observados para os cultivares BRS Serena e de grãos (Farias Neto et al., 2006). Com base nos níveis de BRS Sambaíba, mostrando uma alta resistência à doença.

Reduções severas em produtividade podem ocorrer por causa da PVR, dependendo da intensidade dos sintomas (Rupe et al., 1999). O efeito da doença na produtividade depende fundamentalmente do estádio fenológico da planta, da extensão dos sintomas radiculares e dos sintomas foliares e do progresso da doença a partir desses sintomas. Farias Neto et al. (2006), trabalhando com parcelas inoculadas e não inoculadas com Fusarium spp., observaram reduções em produtividade de grãos de até 27%, em cultivares susceptíveis, que apresentaram severos sintomas foliares, correspondendo a cerca de 30% de desfolha no estádio R6. Dessa forma, Farias Neto et al. (2006) observaram que, para cada unidade de índice de PVR, ocorreu, em média, 1% de queda em produtividade de grãos (Farias Neto et al., 2006). Com base nos níveis de doença observados nos presentes ensaios, as perdas em produtividade de grãos estimadas para os genótipos susceptíveis poderiam atingir índices muito significativos.

 

CONCLUSÕES

Foi observada alta variabilidade genética, entre os genótipos avaliados, para resistência à podridão vermelha da raiz.

Fontes de resistência à doença foram observadas, nos três grupos de maturação, em cultivares comerciais e em linhagens em fase final de melhoramento.

Os genótipos de ciclo de maturação precoce avaliados apresentaram índices de PVR inferiores aos dos genótipos de ciclo de maturação médio e tardio.

 

AGRADECIMENTO

Os autores agradecem ao pesquisador Fávio Dessaune Tardin, pelas contribuições nas análises estatísticas dos dados.

 

REFERÊNCIAS

Aoki T, O'donnell K, Homma Y & Lattanzi AR (2005) Sudden death syndrome of soybean in South America is caused by four species of Fusarium: Fusarium brasiliense sp. nov., F. Cuneirostrum sp. nov., F. Tucumaniae, and F. virguliforme. Mycoscience, 6:162-183.         [ Links ]

Cruz CD (2008) Programa genes: versão Windows; aplicativo computacional em genética e estatística. Viçosa, UFV. 648p.         [ Links ]

Embrapa Soja (2001) Tecnologias de produção de soja -; região central do Brasil -; 2001/2002. Londrina, Embrapa Soja. 267p. (Documentos, 167).         [ Links ]

Embrapa Soja (2002) Tecnologias de produção de soja -; região central do Brasil -; 2003. Londrina, Embrapa Soja/Embrapa Cerrados/Embrapa Agropecuária Oeste/ ESALQ. 199p. (Sistemas de produção, 1).         [ Links ]

Embrapa Soja (2006) Tecnologias de produção de soja -; região central do Brasil -; 2007 Londrina, Embrapa Soja/Embrapa Cerrados/ Embrapa Agropecuária Oeste/ ESALQ. 199p. (Sistemas de produção, 11).         [ Links ]

Farias Neto AL, Hartman GL, Pedersen WL, Li S, Bollero GA & Diers BW (2006) Irrigation and inoculation treatments that increase the severity of soybean sudden death syndrome in the field. Crop Science, 46:2547-2554.         [ Links ]

Farias Neto AL, Schimidt M, Hartman GL, Li S & Diers BW (2008) Inoculation methods under greenhouse conditions for evaluating soybean resistance to sudden death syndrome. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 43:1475-1482.         [ Links ]

Ferh WR, Caviness CE, Burmood DT, Pennington JS (1971) Stage of development descriptions for soybeans, Glycine max (L.) Merrill. Crop Science, 11:929-931.         [ Links ]

Gásperi AC, Prestes AM, Costamilan LM (2003) Reação de cultivares de soja à podridão vermelha da raiz causada por Fusarium solani f. sp. glicynes. Fitopatologia Brasileira, 28:544-547.         [ Links ]

Gibson PT, Shenaut MA, Nijti VN, Suttner RJ & Myers Jr O (1994) Soybean varietal response to sudden death syndrome. In: 24ª Soybean Seed Research Conference, Chicago. Procedures, American Seed Association. p.20-40.         [ Links ]

Hartman GL, Huang YH, Nelson RL & Noel GR (1997) Germplasm evaluation of Glycine max for resistance to Fusarium solani, the causal organism of sudden death syndrome. Plant Disease, 81:515-518.         [ Links ]

Igbal MJ, Meksem K, Njiti VN, Kassem MA & Lightfoot DA (2001) Microsatellite markers identify three additional quantitative trait loci for resistance to soybean sudden-death syndrome (SDS) in Essex x Forrest RILs. Theoretical and Applied Genetics 102:187-192.         [ Links ]

Nijti, VN, Johnson JE, Torto TA, Gray LE & Lightfoot DA (2001) Inoculum rates influences selection for field resistance to soybean sudden death syndrome in the greenhouse. Crop Science, 41:1-6.         [ Links ]

Oliveira PRPM (2010) Variabilidade de isolados de Fusarium spp. causadores da podridão vermelha da raiz em soja. Dissertação de Mestrado. Universidade de Brasília, Brasília. 58p.         [ Links ]

Rupe JC & Gbur Junior EE (1995) Effects of plant age, maturity group, and the environment on disease progress of sudden death syndrome of soybean. Plant Disease, 79:139-143.         [ Links ]

Rupe JC, Robbins RT & Gbur Jr EE (1997) Effect of crop rotation on soil population densities of Fusarium solani and Heterodera glycines and on the development of sudden death syndrome of soybean. Crop Protection, 16:575-580.         [ Links ]

Rupe JC & Hartman GL (1999) Sudden death syndrome. In: Hartman GL, Sinclair JB & Rupe JC (Eds) Compendium of soybean diseases. St. Paul, APS Press. p.37-39.         [ Links ]

SAS Institute Inc. (2000). Statistical Analysis System user's guide. 5th ed. Cary, Statistical Analysis System Institute.         [ Links ]

Silva JFV, Carneiro GES, Yorinori JT, Almeida AMR, Arias CAA, Kiihl RAS, Almeida LA, Oliveira E, Lima CG, Schober IC, Goulart Filho G, Aliglieri GMG; Gomes JI; Souza NV & Benato LC (2002) Contribuição ao desenvolvimento de linhagens de soja com resistência a patógenos. Londrina, Embrapa Soja. 43p. (Boletim de pesquisa e desenvolvimento, 1).         [ Links ]

Westphal A, Abney TS, Xing LJ & Shaner GE (2008) Sudden Death Syndrome of Soybean. Disponível em: <http://www.apsnet.org/education/lessonsplantpath/SuddenDeathSyn>. Acessado em: 24 de junho de 2010.         [ Links ]

Yorinori JT (2000) Evolução da ocorrência e da severidade da podridão vermelha da raiz da soja (PVR/SDS) e reação das cultivares comerciais à doença. In: 22ª Reunião de Pesquisa de Soja da Região Central do Brasil, Cuiabá. Resumos, Embrapa Soja. p.94.         [ Links ]

 

 

Recebido para publicação em 15/12/2011 e aprovado em 19/12/2012.